信息摘要：
2026年，山东大学(Shandong University)植物发育与环境适应生物学教育部重点实验室团队在《Advanced Science(ISSN 2198-3844)》(SCI期刊，Wiley出版社)发表文献《A Novel GmSIN1-GmRNF1a-GmCSN5a Module Determines Soybean Salt Tolerance and Yield Under Saline Soil Conditions》，文献中使用LUYOR-3415RG双波长荧光蛋白激发光源对绿色荧光蛋白标记的大豆转基因毛状根(GmSIN1-GFP)进行荧光激发与成像观察，用于转基因毛状根的荧光筛选与大豆耐盐机制研究，为耐盐基因的挖掘与单倍型聚合育种提供关键实验证据。
山东大学将LUYOR-3415RG用于大豆转基因毛状根GFP荧光筛选与耐盐机制研究
2026年，山东大学(Shandong University)植物发育与环境适应生物学教育部重点实验室、山东省精准分子作物设计育种重点实验室、山东省植物逆境生物学与遗传改良重点实验室(生命科学学院)团队在《Advanced Science(ISSN 2198-3844)》(SCI期刊，Wiley出版社)发表文献《A Novel GmSIN1-GmRNF1a-GmCSN5a Module Determines Soybean Salt Tolerance and Yield Under Saline Soil Conditions》，文献中使用LUYOR-3415RG双波长荧光蛋白激发光源用于大豆转基因毛状根GFP荧光成像实验，对绿色荧光蛋白标记的大豆毛状根进行荧光激发与观察，用于转基因阳性毛状根的快速筛选与耐盐基因功能研究。LUYOR-3415RG双波长荧光蛋白激发光源在实验流程中承担关键的荧光激发与成像环节，通过特定波长激发光使GFP发出明亮绿色荧光，实现大豆转基因毛状根的直观成像，为研究结果的可重复性与可靠性提供保障。
山东大学位于山东青岛，是教育部直属建设高校，也是植物发育与环境适应生物学教育部重点实验室及山东省多个重点实验室的依托单位，长期围绕大豆等作物开展耐盐、耐逆与分子设计育种研究。大豆(Glycine max)是重要的食用蛋白与植物油来源，但产量严重受盐胁迫影响。该研究团队以盐诱导NAC转录因子GmSIN1为核心，系统解析了其翻译后调控机制：RING型E3泛素连接酶GmRNF1a介导GmSIN1经26S蛋白酶体降解，而COP9信号复合体亚基GmCSN5a直接抑制其E3连接酶活性；盐胁迫下GmCSN5a抑制GmRNF1a活性，稳定GmSIN1蛋白，进而激活下游ROS/ABA通路，提高大豆耐盐性。团队进一步鉴定了GmSIN1、GmRNF1a与GmCSN5a的优异单倍型，发现聚合优质单倍型(GmSIN1Hap1-GmRNF1aHap2-GmCSN5aHap1)可在正常与盐渍条件下同步提升大豆单株粒重，建立了基于单倍型聚合的耐盐高产品种选育新策略。LUYOR-3415RG用于大豆转基因毛状根GFP荧光成像作为快速鉴定转基因阳性毛状根、评估耐盐基因功能的关键手段，为上述研究提供了重要实验证据。
本实验采用LUYOR-3415RG双波长荧光蛋白激发光源作为大豆转基因毛状根GFP荧光成像的核心激发光源，用于对绿色荧光蛋白标记的大豆毛状根进行荧光激发与成像观察。转基因毛状根构建阶段，通过发根农杆菌(Agrobacterium rhizogenes)K599介导的转化法在大豆(W82或GmRNF1a-OE1背景)上诱导产生转基因毛状根，经LUYOR-3415RG(365/470 nm激发)荧光成像系统对毛状根进行初步荧光筛选，快速鉴定GFP/YFP荧光阳性根；随后将阳性毛状根置于Zeiss LSM 880共聚焦显微镜下进行亚细胞荧光成像，通过YFP/Bright/Merge多通道成像清晰显示GmSIN1与GmRNF1a、GmCSN5a在毛状根细胞中的荧光共定位与双分子荧光互补(BiFC)信号(Fig. 2C)。LUYOR-3415RG双波长荧光蛋白激发光源用于大豆毛状根GFP荧光成像结果表明，该激发光源可稳定激发绿色荧光蛋白发光，荧光信号清晰、成像对比度高，为转基因毛状根的高通量筛选与耐盐基因功能验证提供了可靠的技术手段。
图1 LUYOR-3415RG照明下大豆转基因毛状根YFP荧光成像（BiFC，论文Fig. 2C）
该研究证实，LUYOR-3415RG双波长荧光蛋白激发光源可用于大豆转基因毛状根GFP荧光成像实验，适用于荧光标记转基因毛状根鉴定、耐盐基因功能验证、蛋白互作与亚细胞定位成像等分子生物学与植物科学研究应用场景。LUYOR-3415RG双波长荧光蛋白激发光源在国内外高校和科研院所得到广泛好评，欢迎私信或留言联系上海路阳了解详情！
原文段落
大豆毛状根GFP荧光成像方法原文
Transgenic soybean hairy roots (genetic backgrounds: W82 or GmRNF1a-OE1) were generated via Agrobacterium rhizogenes K599-mediated transformation and hydroponically in the greenhouse. Roots were preliminarily screened using a LUYOR-3415RG fluorescence imaging system (365/470 nm excitation).
耐盐机制研究结果原文
To explore the genetic relationship between GmSIN1 and GmRNF1a in salt tolerance, we generated transgenic soybean hairy roots in the GmRNF1a-OE1 transgenic background harboring either the EV or UBIpro::GmSIN1-GFP construct. RT-qPCR analysis revealed a 41-fold upregulation of GmSIN1 expression in transgenic hairy roots compared to the EV control (Figure S13). After a 5-day treatment with 150 mM NaCl under controlled greenhouse conditions, transgenic plants overexpressing both GmSIN1 and GmRNF1a displayed less wilting and greater fresh weight than EV/GmRNF1a-OE1 plants (Figure 6L,M), demonstrating enhanced salt tolerance.
研究结论原文
In conclusion, our study reveals that the GmSIN1-GmRNF1a-GmCSN5a module enhances soybean salt tolerance by maintaining GmSIN1 orthostasis. Pyramiding elite haplotypes establishes an innovative haplotype-based breeding strategy for developing salt-tolerant and high-yielding soybean by harnessing natural variation.
图2 GmSIN1-GmRNF1a-GmCSN5a模块调控大豆耐盐性工作模型（论文Fig. 9）
DOI:10.1002/advs.74216
